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【CEM MultiPep】SPOT 合成的質(zhì)量控制

 更新時間:2024-04-08 點擊量:591

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什么是SPOT合成?

What is SPOT synthesis?

SPOT 方法由 Ronald Frank 開發(fā),用于在均質(zhì)膜載體上的不同位點同時合成多肽。該技術(shù)的原理是將預(yù)活化的氨基酸衍生物的小液滴分配到多孔膜上預(yù)定義的位置陣列上。液滴被吸收并形成單獨的反應(yīng)室,用于固相合成中的化學(xué)反應(yīng)。大量不同的點可以排列在一張膜上,并且這些點中的每一個都可以通過相應(yīng)試劑溶液的手動或自動輸送來單獨處理。每個區(qū)域的點數(shù)和點大小由膜的吸收能力和液滴的體積決定。根據(jù)基質(zhì)的特定功能,點大小與合成的特定規(guī)模相關(guān)。 Ronald Frank 最初使用的濾膜仍然是蕞受歡迎的載體,由改性纖維素濾紙制成。


在 MultiPep 1&2 合成器上合成肽陣列是一種創(chuàng)建大量肽的廉價且方便的方法。它們通過活化氨基酸液滴的沉積在纖維素膜支持物上合成。與之前相比,膜和氨基功能之間的鍵合在穩(wěn)定性上得到了改善。它現(xiàn)在對 100% 三氟乙酉夋穩(wěn)定,并且在堿性條件下進行試驗不會導(dǎo)致肽損失。該鍵不能被切割以釋放肽。肽保持共價連接,因此難以進行質(zhì)量控制。有幾種方法可以獲取有關(guān)合成質(zhì)量的信息。

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02



合成與表位分析

Synthesize and analyze some epitopes

您可以制造一些您知道在以前的項目中起作用的肽,但這也需要您掌握一些抗體。一種更簡單的方法是制作鏈霉親和素識別的 Strep-tag。然后可以使用通用的鏈霉親和素報告偶聯(lián)物進行檢測。通過截短表位可以實現(xiàn)不同的信號強度或親和力。Strep-tag II 的完整序列是:NWSHPQFEK,并且可以檢測到埋在另一個序列中的 HPQ 核心。

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耦合報告分子

Couple a reporter molecule

通常在每個合成周期中都有一個乙酰化步驟,該步驟應(yīng)封頂所有未反應(yīng)的鏈。如果出現(xiàn)嚴(yán)重的合成問題,在后面的合成步驟中就會出現(xiàn)完荃的封頂,而不會留下任何游離的氨基。因此,N端的報告分子將表明大部分合成是正常的。有用的報告分子有

  • 生物素,用簡單的普通鏈霉親和素-報告基因共軛物檢測

  • 鏈霉親和素報告共軛物也能檢測到 N 端的鏈霉標(biāo)簽II(NWSHPQFEK)。

  • 羅丹明染料,像氨基酸一樣容易耦合,在日光條件下可見

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在合成過程中進行一些檢查

Perform some checks during synthesis

手冊中介紹了在合成過程中觀察游離氨基的溴酚染色步驟。簡而言之,在溶液中沒有堿的情況下用溴酚藍在 DMF 中的極稀釋溶液(1% 溶液,1:100 稀釋)對膜進行染色。斑點應(yīng)顯示為淡藍色,其強度隨序列而變化??蓪⒈∧び坝?,以詠久記錄一些相關(guān)的合成步驟。您還可以使用手持式紫外燈來觀察合成后的肽。特別是色氨酸序列在這種紫外燈下會發(fā)光。這種紫外燈很容易買到而且價格便宜。通常由礦物學(xué)家使用或用于驗鈔。

上圖為煙草在 LUYOR-3410 紫外線燈照射下觀察到的效果

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分析一些參考肽

Analyze some reference peptides

您可以切出單個斑點,對其進行氨基酸分析。更好、信息量更大的質(zhì)控方法是 MALDI 分析。讓一些肽在 C 端以 Lys-Gly 結(jié)尾。在完荃側(cè)鏈脫保護后切下斑點,用胰蛋白酶去除肽。這樣得到的溶液中即使只有百分之幾的肽被釋放出來,也足以進行 MALDI分析。請注意,如果存在其他 Lys或 Arg 殘基,肽也會在內(nèi)部被切斷。如果在第一個循環(huán)中引入一個可裂解的連接體(如 Rink 酰胺連接體),則整個肽都可以用反式脂肪酸釋放出來。在這種情況下,必須在側(cè)鏈脫保護之前將點切割出來并單獨處理。釋放的量也足以用于 HPLC 操作。

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一般性評論

General remarks

SPOT 合成的最佳肽段長度為 10 到 25 個殘基。超過這個長度后,質(zhì)量就會慢慢下降,因為并非所有的肽鏈都能完荃進入。正如 RudolfVolkmer 小組的詳細分析所示,纖維外側(cè)較容易獲得的肽鏈甚至可以增長到 50 個殘基的長度。在這種情況下,通過 Fmoc-和 Boc-beta- 丙氨酸混合物的耦合,膜的初始負載量至少應(yīng)減少 10-100 倍。肽的原始負載量通常比抗體結(jié)合所需的負載量高出幾個數(shù)量級,甚至只有很少的正確序列能被檢測到。因此,在每個合成步驟中采用良好的封端程序,并通過軟件引導(dǎo)的機器人進行可靠的氨基酸分配,在 N 端使用報告染料就可以對合成程序進行簡單的驗證,讓人放心。

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使用林克酰胺連接劑進行 SPOT 合成的質(zhì)量控制

QC on SPOT synthesis using a Rink amide linker

在 MultiPep 1&2 合成器上合成肽陣列是一種廉價而方便的大量合成肽的方法。它們是通過沉積活化氨基酸液滴在纖維素膜支架上合成的。與第一份出版物相比,膜與第一個耦合氨基酸功能之間的結(jié)合穩(wěn)定性有所提高?,F(xiàn)在,它對 100% 的反式脂肪酸都很穩(wěn)定,在堿性條件下進行檢測也不會導(dǎo)致肽的損失。這種鍵不能被裂解以釋放肽,而是保持共價連接,因此很難進行質(zhì)量控制。如果在第一個循環(huán)中引入了可裂解連接體(如 Rink 酰胺連接體),則整個肽都可以用反式

脂肪酸釋放出來。在這種情況下,必須在側(cè)鏈脫保護之前切出該點并單獨處理。


建議程序:

    1. 根據(jù)儀器手冊設(shè)置合成。

    2. 在合成的第一個循環(huán)中,將 FMOC-Rink 酰胺連接物引入所需的質(zhì)控肽。***質(zhì)控肽可在膜角附近合成,以便于去除。

    3. 合成后,從儀器上取下干燥的膜并觀察斑點

  • 使用手持式紫外線燈最容易做到這一點。然后用鉛筆圈出質(zhì)控點,再從膜上剪下。

  • 或者,為了使斑點顯現(xiàn)出來,可將膜浸泡在 DMF 溶液中的1% 溴酚藍中。斑點應(yīng)呈現(xiàn)淡藍色,其強度隨序列而變化。

    4. 將切下的質(zhì)控點放入 1.5 mL 螺旋蓋微量離心管(或類似試管)中,加入 150 uL 通用裂解混合物(或自選混合物)。蓋緊試管蓋,培養(yǎng) 2-4小時。這將使肽從各自的林克酰胺連接體上裂解,并去除側(cè)鏈保護基團。

    5. 將含有已裂解多肽的上清液轉(zhuǎn)移到一個新的微量離心管中,并丟棄裝有已用斑點的離心管。

    6. 使用標(biāo)準(zhǔn)實驗室程序?qū)⑷芤和贶醺稍铮☉?yīng)注意強酸和實驗室設(shè)備)。

    7. 用 10 uL 0.1 % 的反式脂肪酸重溶干肽。

    8. 對該溶液進行 MALDI分析,基質(zhì)一般為1μL 或更少。(注意 MW為 -1)

注:三氟乙酉夋(TFA)是一種揮發(fā)性很強的酸。整個裂解和加工過程必須在通風(fēng)櫥中進行。在此階段必須佩戴安全眼鏡、手套和白大褂,并遵守所有安全規(guī)定。所有廢物必須按照國家規(guī)定進行處理。


通用裂解混合物

  • 92.5%(vv)三氟乙,TFA

  • 5% (v/v) 三異丙基硅烷

  • 2.5% (vv) 水

用于可裂解點的 Fmoc 鏈接器

Su et al.

Epigenetics&Chromatin volume 7, Article number:7(2014),組合 PTM 組蛋白肽微陣列合成使用 RespepSL 自動合成器(Intavis AG,KoIn,Germany,MultiPep 1CEM)在改性纖維素上合成肽。將Fmoc從 celluspot 中移除并耦合 Cy3(Lumiprobe,公司)后,就得到了纖維素-Cy3 染料共軛的斑點對照??瞻准毎邔φ战M是通過去除色斑上的 Fmoc 并將試紙置于溶解條件下而制成的。對于肽,初始偶聯(lián)包括等摩爾量的Fmoc-Ala-OH 和 Boc-Ala-OH,以減少樹脂負載并提高合成質(zhì)量。每次合成的肽都含有可被酸裂解的鏈節(jié),以便通過高效液相色譜法和質(zhì)譜法進行質(zhì)量評估(附加文件 12:表 S2)。此外還加入了 20 原子的聚乙烯連接體(PE)(Novabiochem 公司),以提高合成效果和陣列中的蛋白質(zhì)結(jié)合力。Fmoc-Glu-(biotinyLPEG)-OH(Novabiochem)是鏈霉親和素的對照。

使用標(biāo)準(zhǔn)的 Fmoc/tBu 化學(xué)方法生成 13 氨基酸肽。如前文所述 [24],肽的 PTM 以適當(dāng)保護的單體形式引入。合成完成后,用 82.5% 的三氣乙酸(TFA)去除側(cè)鏈保護基團:5% 硫代苯甲醚5% 水:5%二氯甲烷中的飽和苯酚:2.5%乙烷二硫醇,持續(xù) 90 分鐘(每個點150μ)。取出溶液,換上 250 μ的 88.5% 反式脂肪酸、4% 三氟甲磺酸、2.5% 三異丙基硅烷和 5% 水,輕輕攪拌過夜以溶解纖維素。用冷的二乙酉迷沉淀肽纖維素共軛物兩次,晾干幾分鐘,然后重新溶解到100μ 的二甲基亞砜(DMSO)中。


Boisguerin et al.

Chemistry & Biology, Vol. 11, 449–459, April, 2004,我們用與 PSD-95 PDZ3-結(jié)構(gòu)域結(jié)合的多肽 NYKQTSVCOOH 測試了硫醚環(huán)化的效率[148]。溴乙?;?10)(粗體數(shù)字 10-12 參考圖 3.5 (A))是在幾個可裂解點上合成的(通過加入Fmoc-Rink 連接器實現(xiàn)可裂解性)。3 小時后,用反式脂肪酸將肽產(chǎn)物 h-1、h-2 和 h-3 從點上裂解,并用 HPLC 和 ESI-MS 進行分析(圖 3.5 (B))。對反應(yīng)產(chǎn)物的分析清楚地表明,在 h-3 條件下,硫醚-環(huán)化反應(yīng)的效率很高。為了確定肽序列對環(huán)化!清除步驟的影響,我們又合成了兩種膜結(jié)合溴乙?;?EFHAALGSYVCOOH和 QHIDSQKKACOOH。


關(guān)于點合成的常見問題

1. SPOT 合成的時間是什么時候?

使用雙偶聯(lián)方案合成 4x384 肽時,每個周期需要 2 個小時,最后處理需要 2-3 個小時。每個周期的操作時間約為 30 分鐘,用于制備活性衍生物和清洗膜。

2. 膜上肽的密度是多少?

標(biāo)準(zhǔn)密度為 10x15 厘米纖維素膜片上 600 個肽網(wǎng)格,中心到中心的距離為 4.2 毫米。也可以自由定義其他網(wǎng)格。在非常受控的條件下,纖維素膜上的密度可達 25x40 個點。

3. 一個點有多少肽?

我們提供的膜經(jīng)過衍生處理后,游離氨基的負載量約為 300-400 nmol/cm2。每個斑點的負載量可通過面積計算得出。

例如:一個直徑為6毫米的點約有 80 納摩爾的肽,一個直徑為3 毫米的點約有 20 納摩爾的肽。

4. 在 CelluSpots 合成過程中,應(yīng)選擇哪種品牌的濾紙放在框架下?

建議使用 Whatman 540 或 541

5. 乙?;嚢彼崛绾斡糜诤铣?

獲取 Fmoc-LyS(Ac)-OH,CAS#159766-56-0,并按照與 MultiPep 1&2 相同的標(biāo)準(zhǔn)偶聯(lián)方法進行偶聯(lián)。

6. Ahx連接劑的親水性對應(yīng)物是什么?

建議使用 Fmoc-8-氨基-3,6-二氧雜辛酸。

7. 如何提高小規(guī)模濾板合成的產(chǎn)量?

使用 Ramage 樹脂(PC-01-0601),用小容量裂解雞尾酒可立即裂解肽。

8. 如何使用 MultiPepRSi 或 RespepSL 合成 PNA 使用以下設(shè)置:

PNA 單體:0.3M 在 NMP 中使用新型偶聯(lián)劑

活化劑:HATU 或 PyAOP(0.6M 溶液);HATU 更穩(wěn)定,PyAOP 應(yīng)每天更新。

堿混合物:DIPEAV2,6-lutidine(1.2/1.8M,DMF 中),兩種堿在 DMF 中的混合比例為20.09%(vvv)。

9. 如何減少消旋化?

在所有合成的肽中,外消旋化約占 1%。消旋化會使肽更加穩(wěn)定,從而導(dǎo)致錯誤折疊。苯丙氨酸和組氨酸會發(fā)生消旋化。組氨酸在 50C 或更高的溫度下很容易發(fā)生消旋化。DIC 和 OxymaPure 的組合可減少消旋化。PyOxim 和 NMM 的組合更易發(fā)生消旋化,但不如 HBTU 和 NMM 的組合。

10. 如何減少脫保護過程中天冬氨酸的形成?

在整個合成過程中,用 20% 的哌啶在 DMF(含 0.1M HCOOH)中對 Fmoc 基團進行脫保護,以避免天冬酰亞胺副反應(yīng)。

11. 如何從 SPOT 膜上裂解多肽?

使用 Fmoc 鏈接劑作為第一個氨基酸。切出所需的點并涂上裂解液。Rink-Linker 會自行裂解并生成 C 端酰胺。

12. 我的 SPOT 肽中有一部分 N 端酰胺被乙酰化了。如何避免這種情況?

最后一個氨基酸使用叔丁氧羰基氨基酸。這樣可以避免濾紙和濾紙下方通道中的微量醋酸酐造成乙?;?/p>

13. 溶解了 NMP 的氨基酸可以保存多久?

除半胱氨酸和蛋氨酸外,氨基酸溶液可在 4℃ 下保存一個月。請注意,如果粉未變質(zhì),丙氨酸和谷氨酸會產(chǎn)生沉淀。

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